000047965 001__ 47965
000047965 005__ 20160303123204.0
000047965 037__ $$aTAZ-TFG-2015-896
000047965 041__ $$aspa
000047965 1001_ $$aPastor Bonel, Tania
000047965 24500 $$aComparación de la aplicabilidad de técnicas clásicas y moleculares para el diagnóstico de la cryptosporidiosis en la práctica de un laboratorio clínico.
000047965 260__ $$aZaragoza$$bUniversidad de Zaragoza$$c2015
000047965 500__ $$aAporta en secretaría material físico Resumen disponible también en inglés
000047965 506__ $$aby-nc-sa$$bCreative Commons$$c3.0$$uhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/3.0/
000047965 520__ $$aLa cryptosporidiosis en humanos se caracteriza normalmente por síntomas gastrointestinales agudos de diarrea acuosa acompaña de dolores cólicos abdominales, vómitos, febrícula y pérdida de apetito. Estos síntomas indican que el patógeno principalmente afecta al intestino delgado, causando malabsorción e inflamación. El objetivo de este trabajo es la comparación de los métodos de diagnóstico para Cryptosporidium spp en muestras de heces, que se encuentran disponibles en la actualidad para su posible utilización en la rutina de un laboratorio de Parasitología. Se han analizado un total de 74 muestras, 23 muestras previamente diagnosticadas por microscopía como positivas para Cryptosporidium spp., 32 muestras previamente diagnosticadas como positivas para Giardia duodenalis y 19 muestras diagnosticadas como negativas para tanto para Cryptosporidium como para Giardia duodenalis. A todas ellas se les aplicaron las siguientes técnicas de análisis: inmunocromatografía, PCR para los genes SSU y gp60 y LAMP-PCR, esta última recientemente descrita, La comparación se llevó a cabo tomando microscopía como técnica “gold standard” y calculando la sensibilidad, especificidad, alores predictivos positivos (VPP) y negativos (VPN) y el índice de concordancia Kappa. Se ha obtenido una buena concordancia de la inmunocromatografía (0,871) con microscopía y mejor concordancia de la PCR-SSU () que de PCR-gp60 (), siendo la peor la obtenida para la LAMP-PCR (). Estos resultados se interpretan por la necesidad de tratamiento previo de las muestras para las técnicas moleculares, lo que supone además, un aumento del coste respecto a microscopía e inmunocromatografía. Considerando como factores fundamentales sus características de sensibilidad, especificidad, VPN, VPP, coste y concordancia con microscopia, el orden de aplicabilidad de las técnicas estudiadas, sobre muestras de heces frescas, en un laboratorio clínico de rutina de Parasitología, es el siguiente: microscopía > inmuncromatografía > PCR (SSU, gp60) > PCR- LAMP.
000047965 521__ $$aGraduado en Medicina
000047965 540__ $$aDerechos regulados por licencia Creative Commons
000047965 700__ $$aGoñi Cepero, María Pilar$$edir.
000047965 7102_ $$aUniversidad de Zaragoza$$bMicrobiología, Medicina Preventiva y Salud Pública$$cParasitología
000047965 8560_ $$f614648@celes.unizar.es
000047965 8564_ $$s2099589$$uhttps://zaguan.unizar.es/record/47965/files/TAZ-TFG-2015-896.pdf$$yMemoria (spa)
000047965 909CO $$ooai:zaguan.unizar.es:47965$$pdriver$$ptrabajos-fin-grado
000047965 950__ $$a
000047965 951__ $$adeposita:2016-03-03
000047965 980__ $$aTAZ$$bTFG$$cMED